超分辨荧光辅助衍射层析成像揭露细胞器相互作用全景  
 

近日，北京大学物理学院施可彬研究员和分子医学所陈良怡教授等人合作将三维无标记光学衍射层析显微成像与二维海森结构光超分辨荧光成像技术相结合，发展了超分辨荧光辅助衍射层析（SR-FACT）双模态显微成像技术，实现了对细胞内细胞器相互作用过程的高速三维全景成像。其中，光学衍射层析成像模态首次实现了活细胞内线粒体、脂滴、核膜、染色体、内质网及溶酶体等多种亚细胞结构的同时高速三维成像。在双模态系统对活细胞的观察中，他们发现了一种新的亚细胞结构，命名为“黑色液泡小体”，并对其在细胞代谢过程中的作用进行了研究。这一双模态成像方法在细胞生物学研究及生物医学成像领域有着广泛应用前景。相关成果以“Super-resolution fluorescence-assisted diffraction computational tomography reveals the three-dimensional landscape of the cellular organelle interactome”在线发表在国际光学顶尖光学期刊《Light: Science & Applications》上。论文第一作者是北京大学博士后董大山，博士后黄小帅和博士研究生李柳菊，通讯作者为陈良怡教授和施可彬研究员。

超分辨荧光成像技术的出现极大的推动了现代生命科学对细胞内新结构和新的动态过程的研究。然而，受限于较宽的发射光谱及光毒性，其仅能对有限几种荧光标记同时成像，难以用于细胞内不同细胞器间复杂代谢过程的研究。电子显微镜虽然具有更全面及高分辨率的成像能力，但不能对活细胞进行动态成像。即使在活细胞的超分辨荧光成像中，依然也需面对荧光漂白效应对三维成像速度、成像总时程的限制。

无标记成像则不受荧光标记物引入的各种限制。无标记成像技术通过细胞内不同结构表现出的不同光学属性来进行成像，如以相衬显微镜为代表的各种相位成像方法可成像具有不同折射率的结构。新近出现的光学衍射层析成像通过结合断层扫描及全息显微成像技术，可在衍射模型下实现三维无标记成像。但先前的工作在关注提高光学衍射层析成像分辨率的同时，忽略了较慢的成像速度在活细胞成像中造成的分辨率下降的问题。同时，由于缺乏分子特异性成像模态作为对照，其三维成像结果缺乏说服力。

因此，亟需将无标记的光学衍射层析成像模态与超分辨荧光成像模态相结合用于活细胞成像，以同时实现细胞内全景的分子特异性成像。同时还需考虑到两个模态各自的特点，最大程度的提高成像速度，以适应快速、长时程成像的需求。

在这项研究中，研究团队集成了三维光学衍射层析显微成像模态与海森二维结构光照明荧光成像模态，实现了对活细胞的快速、长时程双模态成像。在三维光学衍射层析成像模态中，研究团队发展了新的波矢迭代算法以修正高速的照明光断层扫描中出现的误差，以在保证高速成像的同时保持成像系统中充足的光子通量，从而有效提高了高速成像过程中的灵敏度，可以200nm横向分辨率对40×40×20 ?m3的三维视场以0.8Hz速度成像。而对于超分辨荧光成像模态，研究团队选择了相比传统结构光照明荧光显微镜更加节约光子数的海森二维结构光荧光显微镜来辅助光学衍射层析模态进行分子特异性表征，其横向分辨率可达100nm。利用这一双模态成像系统，研究团队成功对活细胞内六种主要细胞器进行了共定位成像，并展示了其在研究细胞器相互作用中的独特优势。研究团队还观察到了一种新的中性酸碱度的低折射率囊泡结构，并通过长达小时量级的连续成像揭示了其生成和命运路径及组织细胞器相互作用的枢纽功能，命名为“黑色液泡小体”。

研究团队发展的这一双模态成像方法为全面三维的表征活细胞内细胞器相互作用及分子或信息的传递过程提供了一个有力工具。其有助于发现在单一成像模态中被忽略的结构或动态。由于低光毒性和无需特异标记的特点，这种成像方法未来将在生物学及医学中发挥重要作用。

图1. SR-FACT双模态成像系统的硬件实现、算法流程及分辨率表征。

（a）SR-FACT硬件系统简图。光学衍射层析使用环状断层扫描，显微图像通过与参考光干涉形成离轴全息图测量。荧光成像模态通过形成具有特定方向条纹的结构光场激发荧光成像。